一、PCR實驗室的清潔消毒
（1）PCR實驗室應設置試劑貯存和準備區(qū)、標本制備區(qū)、擴增反應混合物和擴增區(qū)及擴增產(chǎn)物分析區(qū)4個工作區(qū)城，4個區(qū)域必須是相互獨立的，不能直通，應有緩沖間供工作人員換工作服和鞋，并且有明確的標志，進入各工作區(qū)域嚴格按照從試劑貯存和準備區(qū)→標本制備區(qū)→擴增反應混合物和擴增區(qū)→擴增產(chǎn)物分析區(qū)單一方向進行。
（2）各區(qū)有完善的相應設備，儀器設備和所有物品必須嚴格分開，不得混用，不同的工作區(qū)域使用不同顏色的工作服.工作人員離開時不得將工作服帶出。在整個PCR實驗操作過程中，工作人員都必須戴上手套，并經(jīng)常更換，還要求工作人員戴口罩，避免在處理樣本時對人體造成污染，保證工作人員的身體安全。每次實驗前應作好吸嘴Eppendorf管、反應管和加樣器等物品的高壓消毒，各工作區(qū)域的地面用10%次氯酸鈉消毒，打開排風扇使各區(qū)的空氣流通。
（3）試劑貯存和準備區(qū)：貯存試劑的制備、試劑分裝和主反應混合液的制備都應在該區(qū)完成。貯存試劑和用于標本制備的材料應直接運送至試劑貯存和準備區(qū)，不能經(jīng)過產(chǎn)物分析區(qū)。試劑原材料必須貯存在本區(qū)內(nèi)，并在本區(qū)內(nèi)制備成所需的貯存試劑。貯存試劑溶液經(jīng)檢查可用后，應將其分裝貯存?zhèn)溆帽苊庥捎诮?jīng)常打開反應管吸液而造成污染。目前本科室使用的試劑盒反應液是廠家配好的，單人單管只需從此區(qū)移至下一個工作區(qū)域。工作結東后必須立即對工作區(qū)域進行清潔消毒，實驗室的桌椅表面每次工作后也要清潔，實驗室的空氣消毒打開房項的紫外燈照射。
（4）標本制備區(qū)：標本處理對核酸擴增有很大影響，必須使用有效的提取方法，選擇好的試劑品牌是一個很關鍵的問題，試劑質(zhì)量的好壞直接影響到實驗結果的準確性。臨床標本都集中在本區(qū)，實驗操作過程中一定要嚴格按照實驗室操作流程，特別在加樣中，空氣與液體面摩擦時就可形成氣溶膠污染，所以應避免在本區(qū)內(nèi)不必要的走動，為避免樣本間的交叉污染，加入待測核酸后，必須蓋好含反應混合液的反應管，防止溶液外濺。工作結束后必須立即對實驗臺表面、加樣器、有機玻璃試管架，離心機，首先用10%次氯酸鈉消毒，然后用70%乙醇清潔，另外，實驗臺表面使用254nm波長可移動紫外燈，距離實驗臺上60~90 cm內(nèi)長時間照射照射過夜更好。用過的吸嘴必須放人專用的含次氯酸鈉溶液的容器內(nèi)浸泡，實驗室的桌椅表面每次工作后也要清潔，實驗室的空氣消毒同樣打開房頂?shù)淖贤鉄粽丈洹?/span>
（5）擴增區(qū)：DNA擴增不能從本區(qū)再進人任何“上游”區(qū)城，以避免氣溶膠從本區(qū)漏出，本區(qū)是最主要的擴增產(chǎn)物污染來源，因此必須注意避免通過本區(qū)的物品及工作服將擴增產(chǎn)物帶出。本區(qū)工作后的清潔消毒和紫外燈照射方法與前面區(qū)域相同。
二、PCR實驗室的防污染措施
（1）污染原因：①擴增產(chǎn)物污染：這是 PCR反應中最主要也是最常見的污染問題。因為PCR產(chǎn)物拷貝量大，遠遠高于PCR檢測數(shù)個拷貝的極限，所以，極微量的PCR產(chǎn)物污染，就可造成假陽性。實驗材料如重組克隆的DNA或者來自同一次PCR的擴增產(chǎn)物污染：主要是由于在PCR試劑配制過程中，由于加樣器，容器及其他溶液被PCR核酸模板污染。②測試樣品污染：收集標本的容器被污染或標本放置時由于密封不嚴溢于容器外，或容器外粘有標本而造成相互間交叉污染；標本核酸模板在提取過程中，由于加樣器污染導致標本間污染；尤其是病毒可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染。③氣溶膠污染：最可能造成PCR產(chǎn)物污染的形式是氣溶膠。在空氣與液體面摩擦時就可形成氣溶膠，在操作時比較刷烈地搖動反應管開蓋時、吸樣時及污染加樣器的反復吸樣都可形成氣溶膠而污染。據(jù)計算一個氣溶膠顆?？珊?/span>48 000拷貝，因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題。另外，實驗室的環(huán)境、試劑及任何與擴增產(chǎn)物接觸的東西，都是污染的來源。
（2）防污染措施：PCR 實驗室嚴格分區(qū)：將實驗室分為4個工作區(qū)域并嚴格按照從試劑貯存和準備區(qū)→標本制備區(qū)→擴增反應混合物和擴增區(qū)→擴增產(chǎn)物分析區(qū)單一方向順序進行。各區(qū)必須相互獨立，儀器設備和各種物品嚴格分開，不能串用。分裝PCR試劑：當使用的PCR試劑盒，不是獨立分裝的反應液時，應將PCR反應液預先配制好。然后分裝到反應管-20℃保存，以減少重復加樣次數(shù)，避免污染機會。PCR試劑、PCR反應液與樣品及PCR產(chǎn)物分開保存，試劑盒電面的陽性對照、陽性參考品也應該與試劑分開放置，不應放于同一冰箱。正確使用加樣器：吸樣時要特別小心應緩慢勻速，避免液體濺到加樣器頭上，盡量一次性吸完，忌反復多次抽吸，以免交叉污染或產(chǎn)生氣溶膠。打出液體后拇指不應松開按鈕，將吸嘴壓掉后冉將拇指松開，避免液體回吸。實驗前后按要求作好實驗室的清潔消毒工作，特別是實驗完成后，消毒工作一定要徹底，破壞殘留的DNA防止操作人員污染，使用一次性手套，吸嘴、Eppendorf管和反應管也應該一次性使用。Eppendorf管的質(zhì)量也不容忽視，好質(zhì)量的(有齒輪)Eppendorf管，管蓋密封嚴實，避免樣本外溢和外來核酸的進入。打開之前應先離心，將管壁和管蓋上的液體甩至管底開蓋時動作要輕以防管內(nèi)液體濺出，造成污染。應設陽性對照和陰性對照，選擇拷貝在臨界值的弱陽性作陽性對照，并注意交叉污染的可能性，每次實驗都應有一管不加模板的試劑對照，以監(jiān)測試劑是否污染，還應帶一個不含有被擴增核酸的樣品作陰性對照。
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